1Prélever

1Prélever

L’analyse commence par le prélèvement des échantillons sur le terrain ou en production. La flexibilité de notre gamme de sacs RollBag s’adapte à tout type de prise d’essai (crustacés, produits volumineux comme les laitues, poudres alimentaires...).

2Échantillonner

2Échantillonner

Échantillonnage du prélèvement pour une préparation en vue d’une analyse microbiologique. L’échantillon est placé dans son sac unique avec filtre (BagFilter Pipet & Roll) pour malaxeur évitant la contamination croisée. Le sac tient debout avec un BagOpen.

3Diluer

3Diluer

Peser l’échantillon avec le dilueur DiluFlow Elite 5 kg. Le dilueur DiluFlow ajoute automatiquement le diluant selon le facteur de dilution choisi avec une précision de ± 2 % en accord avec les normes.

4Homogénéiser

4Homogénéiser

L’échantillon est homogénéisé dans un BagMixer SW. Il n’y a pas de contact de l’échantillon avec le malaxeur évitant ainsi les contaminations croisées. Les bactéries sont extraites rapidement de l’échantillon sans être détruites et le filtre présent dans le sac permet d’éliminer les particules dans le filtrat.

5Organiser

5Organiser

Les échantillons homogénéisés sont fermés grâce au sticker de fermeture repositionnable du BagFilter Pipet & Roll. Ils sont ensuite stockés dans un BagRack Slide. La zone de pipetage, positionnée en partie basse du sac, permet un prélèvement facilité du filtrat. Ouvrez/fermez facilement l’accès pipette avec le sticker repositionnable.

6Distribuer

6Distribuer

Avec FlexiPump, la distribution en série des milieux de culture, géloses, diluants… est précise, rapide et stérile.

7Ensemencer

7Ensemencer

Placer l’échantillon filtré dans un godet. L’ensemenceur easySpiral Pro ensemence automatiquement l’échantillon sur une boite de Petri permettant d’avoir 4 logs de dilution sur cette boite.

8Étiqueter

8Étiqueter

Le logiciel dataLink collecte les données de l’ensemencement. Avec le pack dataLink, imprimez l’étiquette Datamatrix. Collez-la sur la tranche de la boite de Petri ensemencée et placez-la dans l’incubateur.

9Compter

9Compter

Une fois l’incubation terminée, le dénombrement automatique est réalisé avec la gamme des compteurs auto Scan. Scannez le code Datamatrix et le Scan se règle automatiquement pour le dénombrement. Cliquez sur « Compter » puis « Valider ». Les images et les résultats sont automatiquement enregistrés dans votre ordinateur pour assurer la traçabilité.

Types d’analyses

Du prélèvement de l’échantillon à l’analyse bactérienne, nous vous proposons une large gamme de produits pour toutes vos analyses (produits laitiers, viandes, produits de la mer, plats préparés... ) en contrôle qualité comme en R&D.

L’utilisation de nos produits permet d’améliorer la qualité et la fiabilité des analyses microbiologiques en offrant répétabilité et reproductibilité.

  • Analyse des indicateurs d’hygiène

    Le nombre d’organismes viables est un indicateur de l’état d’hygiène du produit agroalimentaire ; il est le témoin d’une éventuelle contamination croisée ou d’une biomasse importante. L’énumération donne le résultat de l’état bactériologique de l’environnement et des conditions de production.

    • Flore totale / Flore mésophile
    • Flore lactique
    • Enterobacteries
    • Coliformes
    • Escherichia coli beta glucuronidase positive
    • Pseudomonas aeruginosa
    • Levures et moisissures
    • Bacillus cereus
  • Analyse des pathogènes

    Recherche de la présence d’un éventuel pathogène responsable d’infection (exemple TIAC) dans le produit afin de déterminer si il est sain à la consommation.

    • Salmonella spp.
    • Listeria monocytogenes
    • Campylobacter spp.
  • Recherche et Développement

    Différentes analyses microbiologiques d’un produit agroalimentaire avant sa mise sur la marché.

    • Étude vieillissement
    • Validation process
    • Tests de fertilité / Stérilité
    • Challenge test

Exemple de protocole dans l’industrie agroalimentaire

Prélever l'échantillon dans un sac RollBag

Prélever l’échantillon avec RollBag

Diluer l'échantillon au 1/10e avec DiluFlow

Peser 25 g d’échantillon et diluer au 1/10 avec DiluFlow

Homogénéiser l'échantillon avec le malaxeur BagMixer

Homogénéiser l’échantillon dans un BagMixer

Ensemencer avec easySpiral

Ensemencer les indicateurs qualité avec easySpiral

Obtenir un résultat de conformité avec Scan

Dénombrer les colonies pour obtenir un résultat de conformité avec Scan

Prélever l'échantillon avec le sac RollBag

Prélever l’échantillon avec RollBag

Réaliser un pooling d'échantillon avec DiluFlow Elite

Réaliser un pooling d’échantillons avec DiluFlow Elite 5 kg (avec option Jumbo kit) :
• 375 g dilué au 1/10
• 5 x 25 g dilué au 1/10
• 125 g dilué au 1/4

Homogénéiser l'échantillon avec le malaxeur JumboMix

Homogénéiser l’échantillon dans un JumboMix

Ensemencer avec easySpiral

Ensemencer les indicateurs qualité et/ou pathogènes

Incuber les boites de Petri avec ScanStation

Placer les boites de Petri en incubation dans un ScanStation

Obtenir un résultat de conformité avec ScanStation

Dénombrer et/ou détecter les colonies pour obtenir un résultat de conformité avec ScanStation ou Scan

Protocole agroalimentaire par germe

Micro-organismes instaBag EPT instaBag Fraser ½ DiluFlow BagMixer easySpiral Scan
Flore totale N N N N N
Flore lactique N N N N N
Pseudomonas N N N N N
Enterobacteries N N N N N
Coliformes N N N N N
E. coli ß - glucuronidase + N N N N N
Staphylocoques coagulase + N N N N N
Clostridium perfringens N N N N
ARS à 46 °C N N N N
Bacillus cereus N N N N
Campylobacter N N N
Levures et moisissures N N N
Listeria monocytogenes N N N
Salmonella spp. N N N

En conformité avec les normes internationales

ISO 4833

MICROBIOLOGIE DES ALIMENTS
Méthode horizontale pour le dénombrement des micro-organismes

ISO 7218

MICROBIOLOGIE DES ALIMENTS
Exigences générales et recommandations

ISO 6887

MICROBIOLOGIE
Directives générales pour la préparation des dilutions en vue de l’examen microbiologique

ISO 6887-1

MICROBIOLOGIE
Règles générales pour la préparation de la suspension mère et des dilutions décimales

ISO 6887-2

MICROBIOLOGIE
Règles spécifiques pour la préparation des viandes et produits carnés

ISO 6887-3

MICROBIOLOGIE
Règles spécifiques pour la préparation des produits de la pêche

ISO 6887-4

MICROBIOLOGIE
Règles spécifiques pour la préparation de produits variés

ISO 6887-5

MICROBIOLOGIE
Règles spécifiques pour la préparation du lait et des produits laitiers

ISO 6887-6

MICROBIOLOGIE
Règles spécifiques pour la préparation des échantillons prélevés au stade de production primaire

ISO 11133

MICROBIOLOGIE DES ALIMENTS, DES ALIMENTS POUR ANIMAUX ET DE L’EAU
Préparation, production, stockage et essais de performance des milieux de culture

FDA BAM

BACTERIOLOGICAL ANALYTICAL MANUAL

Notes applicatives

  • Répétabilité de distribution de 9 mL d’une bouteille de 2 litres avec FlexiPump

    Objectif : Évaluer la répétabilité d’un volume distribué consécutivement, après une calibration de FlexiPump et provenant d’une bouteille de diluant de 2L (crépine au fond et bouteille remplie pour la calibration).

    Conclusion : À la vue des résultats obtenus lors de ce test, nous pouvons conclure que la distribution de doses successives avec la FlexiPump, à partir d’une bouteille de 2 litres de diluant, montre une excellente répétabilité. Nous ne constatons pas de dérive du volume distribué au fur et à mesure que la bouteille se vide.

  • FlexiPump : Répétabilité de distribution de 9 mL d’une poche de diluant

    Objectif : Évaluer la répétabilité d’un volume distribué consécutivement, après une calibration de l‘appareil, et provenant d’une poche de diluant de 2 litres.

    Conclusion : À la vue des résultats obtenus lors de ce test, nous pouvons conclure que la distribution de doses successives avec la FlexiPump, à partir d’une poche de diluant, montre une excellente répétabilité. Nous ne constatons pas de dérive du volume distribué au fur et à mesure que la poche se vide.

  • FlexiPump Pro : Test de distribution de 50 mL

    Objectif : Vérifier la précision de distribution d’un volume de 50 mL avec une pompe péristaltique FlexiPump Pro, en ayant un temps de distribution de moins de 4/5 secondes.

    Conclusion : La FlexiPump Pro est précise pour une distribution de 50 mL, dans les conditions exposées ci-dessus. À noter que dans ces conditions, chaque distribution a duré 2,7 sec.

  • easySpiral / easySpiral Pro : Études de validation
    1. Validation de l’ensemencement easySpiral / easySpiral Pro en mode exponentiel décroissant.
      1. Objectif : Étudier la fiabilité de l’ensemencement de l’easySpiral/easySpiral Pro en mode exponentiel décroissant (dite technique d’ensemencement Spiral) en procédant à une étude comparative avec la technique de référence « ensemencement manuel en surface » (dite technique classique).
      2. Conclusion : Nos résultats montrent une forte corrélation (R2 ≥ 0.982) entre l’ensemencement en mode Spiral par l’easySpiral et la technique classique. Aussi la moyenne de la différence des logs UFC/mL entre les deux techniques est 12 fois inférieure à l’écart maximal, donc non significatif.
    2. Efficacité du nettoyage de l’easySpiral / easySpiral Pro
      1. Objectif : Assurer un nettoyage du stylet de l’easySpiral / easySpiral Pro entre chaque série d’échantillon. Vérifier l’efficacité de la désinfection du stylet par ensemencement de diluant stérile.
      2. Conclusion : L’étude montre que pour les six souches bactériennes, le nettoyage en mode long ou en mode court permet une désinfection du stylet et évite les contaminations entre les échantillons. Trois produits désinfectants ont été testés : l’éthanol 70 %, la javel 1 % et une formulation à base de peroxyde d’hydrogène (3 %) + acide peracétique (0,08 %). D’autres formulations avec des concentrations légèrement différentes en H2O2 et APA peuvent être également efficaces.
  • Évaluation des performances du Scan 1200

    Objectif : Le but de cette étude est d’évaluer la performance du Scan 1200 en comparant le comptage manuel et le comptage automatique. Pour une comparaison optimale, les boites de Petri ont été ensemencées et incubées dans notre laboratoire R&D, en utilisant les méthodes standards pour reproduire les conditions normales d’un laboratoire. Le même technicien a compté ensuite les colonies avec un Scan 1200 et manuellement pour obtenir des résultats permettant d’évaluer la précision du Scan. Ce document contient également une étude concernant le temps d’analyse par boite et une estimation du temps passé par les laboratoires.

    Conclusion : Les tests montrent de différentes manières (droite de régression, coefficient de corrélation, moyenne de la différence de valeur de Log, et norme ISO 7218:2007) que le Scan 1200 :
    — Permet de compter plus rapidement (jusqu’à 80 % de gain de temps).
    — Compte aussi bien qu’un autre utilisateur (relation forte entre les 2 méthodes avec une différence moyenne de 2,35 % par boite).

    Le Scan 1200 est un excellent outil pour les laboratoires qui ont besoin de compter un grand nombre de boites avec précision et sans perdre de temps. Tous les résultats peuvent être sauvegardés dans des fichiers spécifiques (appelés sessions) qui contiennent toutes les photos des boites et les dénombrements, ce qui garantit la qualité de l’analyse et une traçabilité parfaite.

  • Le ScanStation en Agroalimentaire

    Objectif : Le but de cette étude est d’évaluer la performance du ScanStation 100 en comparant la méthode manuelle et la méthode automatique sur l’analyse alimentaire et du paiement du lait. Pour une comparaison optimale, 1238 échantillons alimentaires, en doublon, ont été effectués sur une multitude de micro-organismes selon les méthodes de références du laboratoire. Ce document contient aussi les courbes évolutives de la charge bactérienne en fonction du temps.

    Conclusion : L’interprétation de ces courbes nous permet de remarquer l’évolution du nombre d’UFC jusqu’à 15h d’incubation. Par la suite, le nombre d’UFC reste constant. Ainsi, le comptage en temps réel pendant l’incubation nous permet de déterminer rapidement la présence d’une contamination par exemple et donc de définir des actions correctives avant la fin de l’incubation.

  • Le ScanStation en Agroalimentaire (étude réalisée sur milieux Symphony et TBX)

    Objectif : Le but de cette étude est d’évaluer la performance du ScanStation (ISS) en comparant le dénombrement manuel et automatique sur l’analyse d’échantillons ensemencés sur milieux Symphony et TBX.

    Conclusion : La différence de la majorité des comptages n’excède pas la limite de 0,3 log d’UFC. Ces résultats ne présentent pas de différence significative. La lecture des "Time to Result" des différents microorganismes développés sur le milieu Symphony et TBX permet d’anticiper les résultats de comptage et donc de donner la possibilité à l’utilisateur de définir plus rapidement une action corrective.

  • Performance du ScanStation (étude réalisée avec Salmonella typhimurium et Listeria monocytogenes)

    Objectif : L’objectif de cette étude est d’évaluer la performance du ScanStation (ISS) en comparant le dénombrement manuel et automatique de cultures pures de Salmonella typhimurium et de Listeria monocytogenes.

    Conclusion : La différence de la majorité des comptages n’excède pas la limite de 0,3 log d’UFC. Ces résultats ne présentent pas de différence significative. La lecture des "Time to Result" des Salmonella typhimurium et Listeria monocytogenes permet d’anticiper les résultats de comptage et donc de donner la possibilité à l’utilisateur de définir plus rapidement une action corrective.

  • Dénombrement des agents pathogènes d’origine hydrique avec ScanStation, station d’incubation et de comptage en temps réel. Utilisation de membranes de filtration.

    Objectif : L’objectif de cette étude est d’évaluer les performances de ScanStation pour compter en temps réel les colonies sur membrane de filtration. Le dénombrement a été effectué avec des agents pathogènes d’origine hydrique connus pour être impliqués dans des infections associées aux soins de santé (IASS). Des suspensions bactériennes ont été filtrées à travers des membranes qui ont été ensuite déposées sur des boîtes de Petri. Les colonies ont été comptées manuellement et les résultats ont été comparés aux comptages automatiques effectués par ScanStation.

    Conclusion : ScanStation montre de bonnes performances pour compter en temps réel les colonies sur les membranes de filtration. Pour les sept souches testées, les comptages automatiques et manuels sont similaires, lorsque la filtration des suspensions bactériennes est effectuée sur des membranes en polycarbonate blanc (sans grille). Pour obtenir de meilleurs comptages automatiques dans ce cas, la configuration lumineuse conseillée est le fond blanc (lumière venant du bas). Cette étude montre que les colonies bactériennes peuvent être efficacement dénombrées avec ScanStation.

  • Tests de robustesse sur ScanStation

    Objectif : L’objectif de cette étude est d’évaluer les performances de ScanStation (ISS) en comparant le dénombrement manuel et automatique d’échantillons plaqués pour l’évaluation du comptage de la robustesse.

    Conclusion : Les tests de robustesse de ScanStation ont montré des données reproductibles dans des conditions intra- et inter-machines.

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Le comptage rapide et précis, nous permet de gagner 2 à 3 heures par jour.

Les différents secteurs d’activités

Nos produits sont également utilisés pour les analyses microbiologiques dans le domaine environnemental, pharmaceutique, cosmétique, la santé animale et les instituts publics.