• Recherche des indicateurs qualité
• Recherche des pathogènes
• Étude de vieillissement
• Validation process

• Traitement des hydrocarbures
• Analyses de la mutli-résistance aux antibiotiques
• Dénombrement dans les eaux de traitement, des eaux de surfaces, des boues d’épuration

• Microbiotes - Prélèvement biologiques
• Étude de foyer de contamination infectieuse
• Antibiogrammes, dosages d’antibiogrammes et multi-résistance aux antibiotiques
• Dénombrement des flores normales et infectieuses dans les prélèvements

Objectif : Évaluer la répétabilité d’un volume distribué consécutivement, après une calibration de FlexiPump et provenant d’une bouteille de diluant de 2L (crépine au fond et bouteille remplie pour la calibration).

Conclusion : À la vue des résultats obtenus lors de ce test, nous pouvons conclure que la distribution de doses successives avec la FlexiPump, à partir d’une bouteille de 2 litres de diluant, montre une excellente répétabilité. Nous ne constatons pas de dérive du volume distribué au fur et à mesure que la bouteille se vide.

Objectif : Évaluer la répétabilité d’un volume distribué consécutivement, après une calibration de l‘appareil, et provenant d’une poche de diluant de 2 litres.

Conclusion : À la vue des résultats obtenus lors de ce test, nous pouvons conclure que la distribution de doses successives avec la FlexiPump, à partir d’une poche de diluant, montre une excellente répétabilité. Nous ne constatons pas de dérive du volume distribué au fur et à mesure que la poche se vide.

Objectif : Vérifier la précision de distribution d’un volume de 50 mL avec une pompe péristaltique FlexiPump Pro, en ayant un temps de distribution de moins de 4/5 secondes.

Conclusion : La FlexiPump Pro est précise pour une distribution de 50 mL, dans les conditions exposées ci-dessus. À noter que dans ces conditions, chaque distribution a duré 2,7 sec.

1. Validation de l’ensemencement easySpiral/easySpiral Pro en mode exponentiel décroissant.
   1. Objectif : Étudier la fiabilité de l’ensemencement de l’easySpiral/easySpiral Pro en mode exponentiel décroissant (dite technique d’ensemencement Spiral) en procédant à une étude comparative avec la technique de référence « ensemencement manuel en surface » (dite technique classique).
   2. Conclusion : Nos résultats montrent une forte corrélation (R2 ≥ 0,982) entre l’ensemencement en mode Spiral par l’easySpiral et la technique classique. Aussi la moyenne de la différence des logs UFC/mL entre les deux méthodes est 12 fois inférieure à l’écart maximal, donc non significatif.
2. Efficacité du nettoyage de l’easySpiral/easySpiral Pro
   1. Objectif : Assurer un nettoyage du stylet de l’easySpiral/easySpiral Pro entre chaque série d’échantillon. Vérifier l’efficacité de la désinfection du stylet par ensemencement de diluant stérile.
   2. Conclusion : L’étude montre que pour les six souches bactériennes, le nettoyage en mode long ou en mode court permet une désinfection du stylet et évite les contaminations entre les échantillons. Trois produits désinfectants ont été testés : l’éthanol 70 %, la javel 1 % et une formulation à base de peroxyde d’hydrogène (3 %) + acide peracétique (0,08 %). D’autres formulations avec des concentrations légèrement différentes en H2O2 et APA peuvent être également efficaces.

Objectif : Le but de cette étude est d’évaluer la performance du Scan 1200 en comparant le comptage manuel et le comptage automatique. Pour une comparaison optimale, les boites de Petri ont été ensemencées et incubées dans notre laboratoire R&D, en utilisant les méthodes standards pour reproduire les conditions normales d’un laboratoire. Le même technicien a compté ensuite les colonies avec un Scan 1200 et manuellement pour obtenir des résultats permettant d’évaluer la précision du Scan. Ce document contient également une étude concernant le temps d’analyse par boite et une estimation du temps passé par les laboratoires.

Conclusion : Les tests montrent de différentes manières (droite de régression, coefficient de corrélation, moyenne de la différence de valeur de Log, et norme ISO 7218:2007) que le Scan 1200 :
— Permet de compter plus rapidement (jusqu’à 80% de gain de temps).
— Compte aussi bien qu’un autre utilisateur (relation forte entre les 2 méthodes avec une différence moyenne de 2,35 % par boite).

Le Scan 1200 est un excellent outil pour les laboratoires qui ont besoin de compter un grand nombre de boites avec précision et sans perdre de temps.
Tous les résultats peuvent être sauvegardés dans des fichiers spécifiques (appelés sessions) qui contiennent toutes les photos des boites et les dénombrements, ce qui garantit la qualité de l’analyse et une traçabilité parfaite.

Objectif : Le but de cette étude est d’évaluer la performance du ScanStation 100 en comparant la méthode manuelle et la méthode automatique sur l’analyse alimentaire et du paiement du lait. Pour une comparaison optimale, 1238 échantillons alimentaires, en doublon, ont été effectués sur une multitude de micro-organismes selon les méthodes de références du laboratoire. Ce document contient aussi les courbes évolutives de la charge bactérienne en fonction du temps.

Conclusion : L’interprétation de ces courbes nous permet de remarquer l’évolution du nombre d’UFC jusqu’à 15 h d’incubation. Par la suite, le nombre d’UFC reste constant. Ainsi, le comptage en temps réel pendant l’incubation nous permet de déterminer rapidement la présence d’une contamination par exemple et donc de définir des actions correctives avant la fin de l’incubation.

Objectif : Le but de cette étude est d’évaluer la performance du ScanStation en comparant le dénombrement manuelle et automatique sur l’analyse d’échantillons ensemencés sur milieux Symphony et TBX.

Conclusion : La différence de la majorité des comptages n’excède pas la limite de 0,3 log d’UFC. Ces résultats ne présentent pas de différence significative. La lecture des "Time to Result" des différents microorganismes développés sur le milieu Symphony et TBX permet d’anticiper les résultats de comptage et donc de donner la possibilité à l’utilisateur de définir plus rapidement une action corrective.

Objectif : L’objectif de cette étude est d’évaluer la performance du ScanStation en comparant le décombrement manuel et automatique de cultures pures de Salmonella typhimurium et de Listeria monocytogenes.

Conclusion : La différence de la majorité des comptages n’excède pas la limite de 0,3 log d’UFC. Ces résultats ne présentent pas de différence significative. La lecture des "Time to Result" des Salmonella typhimurium et Listeria monocytogenes permet d’anticiper les résultats de comptage et donc de donner la possibilité à l’utilisateur de définir plus rapidement une action corrective.

Objectif : L’objectif de cette étude est d’évaluer les performances de ScanStation pour compter en temps réel les colonies sur membrane de filtration. Le dénombrement a été effectué avec des agents pathogènes d’origine hydrique qui ont été liés à des infections associées aux soins de santé (IASS). Des suspensions bactériennes ont été filtrées à travers des membranes qui ont été ensuite déposées sur des boîtes de Petri. Les colonies ont été comptées manuellement et les résultats ont été comparés aux comptages automatiques effectués par ScanStation.

Conclusion : ScanStation montre de bonnes performances pour compter en temps réel les colonies sur les membranes de filtration. Pour les sept souches testées, les comptages automatiques et manuels sont similaires, lorsque la filtration des suspensions bactériennes est effectuée sur des membranes en polycarbonate blanc (sans grille). Pour obtenir de meilleurs comptages automatiques dans ce cas, la configuration lumineuse conseillée est le fond blanc (lumière venant du bas). Cette étude montre que les colonies bactériennes peuvent être efficacement dénombrées avec ScanStation.

Objectif : L’objectif de cette étude est d’évaluer les performances de ScanStation (ISS) en comparant le dénombrement manuel et automatique d’échantillons plaqués pour l’évaluation du comptage de la robustesse.

Conclusion : Les tests de robustesse de ScanStation ont montré des données reproductibles dans des conditions intra- et inter-machines.